Навигация

Сопостановление опытов

Как показано введение крысам только BCG в дозе 0.5 мг на 1 инъекцию влияния па рост гепатомы Задела практически не оказывало (опыт № 1). Иммунизация крыс гомогепатом печени вызывала, напротив, заметное изменение их реактивности, причем очевидное значение имел здесь способ введения антигенного материала. Так, наиболее выраженное торможение роста опухоли было зарегистрировано тогда, когда проводили 4-кратпую внутрибрюшинную обработку животных в сочетании с BCG. В этой серии опытов количество опухолевых клеток в асцитической жидкости иммунизированных крыс составило в среднем 34.4 - 47.6% от содержания опухолевых клеток в асцитической жидкости у контрольных животных. Менее выраженное торможение (58.5% по сравнению с контрольной группой животных) было получено при однократном подкожном введении увеличенной дозы антигена в смеси с полным адъювантом Фрейда. В то же время внутрибрюшинные инъекции антигена без адъюванта привели к усилению роста опухоли на 44%. Во всех этих опытах различия иммунизированных и контрольных крыс по содержанию опухолевых клеток в асцитической жидкости были достоверными (Р<0.005).

В опытах с лпмфосаркомон Плисса беспородных крыс иммунизировали гомогенатом селезенки, который вводили впутрпбрюшинно и подкожно. Крысы получали, как правило, 5 - 6 инъекций гомогепата с интервалом между в 2 - 3 дня; однократная доза гомогепата - 50 - 100 мг ткани. В ряде опытов па заключительном этапе иммунизации гомогенат селезенки вводили в сочетании с адъювантом - 3 инъекции по 0.5 мг BCG; контрольные животные в утих опытах получали только адъювант. Клетки лимфосаркомы трансплантировали крысам подкожно по 0.2 мл 50%-го гомогената накануне последней инъекции антигена. Спустя 10 дней после трансплантации опухоли животных забивали, а извлеченные у них опухоли взвешивали. Об эффективности иммунизации судили по разнице среднего веса опухолей в контрольных н опытных группах животных.